口蹄疫O型、A型和Asia I型病毒RT—PCR分型方法建立

来源:新西兰留学 发布时间:2020-08-31 点击:

  口蹄疫O型、A型和Asia I型病毒RT—PCR分型方法的建立

 摘要 该研究旨在建立一种快速、灵敏及准确的口蹄疫病毒(FMDV)鉴定与分型的RT-PCR检测技术平台,为临床中有效准确地检测口蹄疫病毒提供有力的支持。根据NCBI中公布的FMDV序列(GenBank:JF749861.1),设计FMDV通用检测引物FP1/FP2;根据NCBI中公布的FMDV O型、A型和Asia I型序列,经过序列分析比对后,分别设计FMDV分型引物FO1/FO2、FA1/FA2和FAS1/FAS2。提取FMDV RNA后,利用随机引物扩增得到FMDV全cDNA,利用设计的引物进行PCR扩增及PCR反应条件的优化。结果表明:该研究建立的RT-PCR检测方法具有很好的特异性、敏感性和可重复性。成功建立了FMDV O型、A型和Asia I型检测及分型方法,为口蹄疫疾病的临床检测、流行病学相关调查及针对性的疫苗的制备奠定基础

  关键词 口蹄疫;RT-PCR;O型;A型;Asia I型

  中图分类号 S855.3 文献标识码 A 文章编号 1007-5739(2013)14-0249-02

  口蹄疫(foot-and-fouth disease,FMD)是由口蹄疫病毒(FMDV)引起的偶蹄类动物共患的接触性传染病,具有流行快、传播广、发病急、危害大等流行病学特点,临床特征主要是患病动物口腔黏膜、乳房和蹄部出现水泡等,位列世界动物卫生组织(OIE)A类家畜传染病之首,一旦暴发,只能通过屠宰和集体焚毁的方式进行处理,给世界范围畜牧业造成严重危害[1-2]。

  FMDV属微RNA病毒科口蹄疫病毒属,是一种正链单股RNA病毒,根据血清学反应的抗原关系,FMDV可分为O、A、C、Asia I、南非Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ 7个不同的血清型和60多个亚型,且各型之间几乎无交叉免疫反应,我国FMDV主要是O、A及Asia I型[3-4]。目前,FMDV的检测主要有病毒分离、间接ELISA和RT-PCR 3种方法。病毒分离虽然有较高的灵敏度,但对病料的要求较高,另外还有成本高、周期长、操作相对复杂等缺点,在临床检测中应用范围较窄[5-6]。间接ELISA对口蹄疫病毒的检测虽然操作相对简单,也具有很好的灵敏度,但对数量较多的病料进行检测时会出现操作繁琐,用时较长的不足,另外获得间接ELISA检测需要的大量标准抗原的也存在一定的难度[7]。RT-PCR是目前应用较为广泛的常规检测方法,具有操作简单快速、成本低、灵敏度高等特点,引物特异性的高低直接影响着RT-PCR检测的效果[8]。因此,该研究针对NCBI中公布的FMDV O、A及Asia I型序列,经过序列比对后,设计得到特异性更好的检测引物,摸索PCR反应条件及重复性,目的在于建立一种快速、灵敏及准确的口蹄疫病毒(FMDV)鉴定与分型的RT-PCR检测技术平台,为临床中有效准确地检测口蹄疫病毒提供有力的支持。

  1 材料与方法

  1.1 试验材料

  RNA提取及反转录试剂盒购自Trans公司,DNA Marker、PCR相关试剂均为TAKARA公司产品,引物设计及序列测序等均在华大基因完成。

  1.2 试验方法

  1.2.1 引物设计。根据NCBI中公布的FMDV序列(GenBank:JF749861.1),参照Hoffma et al[9]设计FMDV通用检测引物FP1/FP2,扩增目的条带为450 bp;根据NCBI中公布的FMDV O型、A型和Asia I型序列,分别设计FMDV分型引物FO1/FO2、FA1/FA2和FAS1/FAS2,扩增片段大小分别为255、347、473 bp。引物序列如表1所示。

  1.2.2 FMDV cDNA的获得与检测。参照Trans公司的TRIzol试剂盒操作步骤提取病毒RNA,操作过程中尽量避免RNA酶的污染。病毒cDNA的合成按照Trans 反转录试剂盒步骤进行,以RT-PCR获得的病毒cDNA为模板,利用设计的FMDV通用检测引物FP1/FP2进行PCR检测,判断是否得到可用于后续试验的cDNA片段。

  1.2.3 FMDV分型PCR方法的建立及特异性检测。以检测正确的各型cDNA为模板,利用设计好的引物FO1/FO2、FA1/FA2和FAS1/FAS2,分别进行PCR扩增试验,PCR程序为:94 ℃ 5 min;94 ℃ 30 s,55~65 ℃ 35 s,72 ℃ 30 s,72 ℃ 完全延伸10 min,探索PCR反应条件。将最终得到的各型PCR检测产物送华大基因测序,验证PCR结果的特异性。

  2 结果与分析

  2.1 FMDV cDNA的获得与检测

  将反转录得到的cDNA利用通用引物进行检测,检测结果如图1所示,获得与预期大小一致的条带,说明成功得到可以用于后续试验的cDNA模板。

  2.2 FMDV分型PCR方法的建立及特异性检测

  用引物FO1/FO2、FA1/FA2和FAS1/FAS2,PCR分别扩增O、A和AsiaⅠ型FMDV及各阴性对照cDNA,结果如图2、3、4所示。可以看出,设计的引物均有很好的特异性,O、A和AsiaⅠ三型之间无交叉,且阴性对照均没有扩增出条带,由此表明建立FMDV分型PCR检测方法有很好的特异性。

  将PCR产物送华大基因测序,测序结果在NCBI数据库中对比显示,各型PCR结果与目前公布的FMDV各型序列具有很高的同源性(≥98%),且各型之间无交叉,特异性较好。

  3 讨论

  口蹄疫最易感染的动物是牛、羊、猪等偶蹄动物,具有传播速度快、传染性强、发病率高等特点,在新流行地区该病发病率几乎达到100%。虽然感染口蹄疫的动物死亡率较低,但是患病动物生产力明显下降,同时与其相关的动物制品也限制上市,造成的经济损失难以估量[10-11]。因此,快速有效的诊断技术在预防和治疗口蹄疫方面是不可或缺的,也是有效控制和消灭该病的前提,而进一步的口蹄疫分型鉴定,对于制订口蹄疫的有效防治措施必不可少。

 (下转第254页)

  (上接第250页)

  近年来,口蹄疫的检测技术取得了很大的进步,其中

  PCR技术以其特异性强、灵敏度高、可同时检测多种样品、需要样品量少、操作简单等特点,在临床检测中应用越来越广。另外,PCR不但可以检测有活毒的样品,也能检测经过灭活的样品,很大程度上增加了临床检测的安全性[12-14]。该研究中采用的RT-PCR检测技术,很好地利用了PCR的优点,设计FMDV通用型检测引物及O型、A型和AsiaⅠ型特异性分型引物,反转录获得FMDV各型cDNA序列后,分别用各型特异分型引物进行PCR检测,均得到与预期大小一致的条带。同时与现代测序技术相结合,将获得的PCR产物送华大基因测序后发现,所扩增的各型PCR条带均有很好的特异性,且各型之间无交叉,说明该研究中建立的FMDV分型RT-PCR检测引物及方法具有很好的特异性,可以用于临床检测。

  4 参考文献

  [1] SCHUELKE,M.An economic method for the fluorescent labeling of PCR fragments[J].Nat Biotechnol,2000,18(2):233-234.

  [2] 蔡扩军,乔军.O型口蹄疫病毒间接免疫荧光检测方法的建立[J].西北农业学报,2012,21(6):13-16.

  [3] 陈建文,邵军军.口蹄疫新型疫苗研究进展[J].畜牧与兽医,2012, 44(10):90-93.

  [4] 吴会杰,汤全发.口蹄疫特点及防治措施探讨[J].中国畜禽种业,2012,8(1):106.

  [5] SAEED A,KHAN Q M,WAHEED U,et al.RT-PCR evaluation for identi-fication and sequence analysis of foot-and-mouth disease serotype O from 2006 to 2007 in Punjab,Pakistan[J].Comparative Immunology,Microbiology and Infectious Diseases,2011,34(2):95-101.

  [6] OLEKSIEWICZ M B,DONALDSON A I,ALEXANDERSEN S.Develo-pment of a novel real-time RT-PCR assay for quantitation of foot-and-mouth disease virus in diverse porcine tissues[J].Journal of Viro-logical Methods,2001,92(1):23-25.

  [7] XU L,HURTLE W,ROWLAND I M et al.Development of a universal RT-PCR for amplifying and sequencing the leader and capsid-coding region of foot-and-mouth disease virus[J].Journal of Virological Meth-ods,2013,189(1):70-76.

  [8] MCMENAMYA M J,MCKILLEN J,REID S M,et al.Development of a minor groove binder assay for real-time one-step RT-PCR detection of swine vesicular disease virus[J].Journal of Virological Methods,2011, 171(1):219-224.

  [9] HOFFMA N N B,BEER M,REID S M,et al.A review of RT-PCR techn-ologies used in veterinary virology and disease control:Sensitive and specific diagnosis of five livestock diseases notifiable to the World Organisation for Animal Health[J].Veterinary Microbiology, 2009,139(1):1-23.

  [10] REID S M,PIERCE K E,MISTRY R,et al.Pan-serotypic detection of foot-and-mouth disease virus by RT linear-after-the-exponential PCR[J].Molecular and Cellular Probes,2010,24(5):250-255.

  [11] MADI M,HAMILTON A,SQUIRRELL D,et al.Rapid detection of foot-and-mouth disease virus using a field-portable nucleic acid extraction and real-time PCR amplification platform[J].The Veterinary Journal,2012,193(1):67-72.

  [12] MOHAPATRA J K,SUBRAMANIAM S,SINGH N K,et al.Experi-mental evidence for competitive growth advantage of genotype VII over VI:Implications for foot-and-mouth disease virus serotype A genotype turnover in nature[J].Research in Veterinary Science,2012,92(2):317-319.

  [13] GORIS N,VANDENBUSSCHE F,HERR C,et al.Validation of two real-time RT-PCR methods for foot-and-mouth disease diagnosis:RNA-extraction,matrix effect,uncertainty of measurement and prec-ision[J].Journal of Virological Methods,2009,92(1-2):157-162.

  [14] TAM S,CLAVIJO A,ENGELHARD E K,et al.Fluorescence-based mult-iplex real-time RT-PCR arrays for the detection and serotype determi-nation of foot-and-mouth disease virus[J].Journal of Virological Methods,2009,161(2):183-191.

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