谈对鹿茸多肽对β等的保护作用分析|鹿茸多肽作用

　　【中图分类号】R 285 【文献标识码】A 【文章编号】1672－3783(2011)07－0353－01 　　【摘要】文章探讨了鹿茸多肽对β�淀粉样蛋白诱导脊髓神经元细胞凋亡的保护作用。
　　【主题词】鹿茸多肽作用分析
　　
　　脊髓损伤（spinal cord injury，SCI）是外科常见的创伤，其年发病率逐年升高。在脊髓损伤中，除了原发的物理打击因素造成神经细胞损伤外，已发现损伤区及临近部位的神经细胞存在迟发性的死亡现象，这种死亡与常见的坏死不同，表现为一种程序性死亡（细胞凋亡），细胞凋亡可能参与了脊髓损伤的病理生理过程。caspase�3是凋亡过程中最重要的蛋白酶，降低其的表达有助于脊髓损伤的修复和再生。鹿茸系鹿科动物梅花鹿或马鹿的雄鹿未骨化密生绒毛的幼角。关于鹿茸多肽混合物，近两年，有学者通过实验证明鹿茸多肽对脊髓损伤后的神经细胞有保护作用，本实验应用鹿茸多肽作用于β�淀粉样蛋白诱导的脊髓神经元细胞凋亡的保护作用，以进一步阐述其对脊髓神经细胞保护作用的机理。
　　一 实验材料
　　 15d孕鼠购自吉林大学实验动物中心；DMEM培养基、胎牛血清、胰蛋白酶购自invitrogen公司；细胞培养瓶和培养板购自Castar公司；神经生长因子（NGF）购自Sigma公司；鹿茸多肽由长春中医药大学惠赠；β�淀粉样蛋白(Aβ25-35)、四甲基偶氮唑盐(MTT)、二甲基亚砜(DMSO)购自(Sigma公司)；兔多克隆caspase�3抗体购自北京中杉金桥生物技术有限公司。
　　二 实验方法
　　1 凝聚态Aβ25-35的制备用超纯水将冻干的Aβ25-35溶解配成100 μmol／L的储存液，于-20℃ 保存，使用前配成所需浓度，于37℃孵育24 h备用。
　　2 胎鼠脊髓细胞悬液制备及培养取孕15d大鼠，10%水合氯醛腹腔麻醉后，无菌状态下取出胎鼠。用Hank’s液冲洗数遍后，放于培养皿中。在解剖显微镜下从背侧完全暴露脑干以下整条脊髓，从正中沟处用钨丝针切除双侧脊髓的后外侧部。将取下的脊髓腹侧组织，经Hank’s液冲洗后，剥去表面的血管等，用显微剪子细剪切成糜状，越细越好；然后用0.25%胰酶37℃消化20min后，用吸管轻轻吹打数次，经200目滤网过滤，离心弃上清，用含15%胎牛血清培养基以1×106/ml接种于塑料培养瓶中。
　　 将细胞培养在含15%胎牛血清、100U/ml氨苄青霉素及100U/ml链霉素的DMEM培养基中，于37℃、饱和湿度、5 %CO2浓度下培养，2～3d 换液一次。实验均取对数生长期细胞，实验前12 h细胞换用无血清培养液，观察不同浓度Aβ25-35的作用。
　　3 MTT比色法检测细胞活力观察不同终浓度(0、5、10、20、25、30μmol／L)的Aβ25-35作用24 h后，细胞活力的变化，细胞接种于96孔板24 h后加入不同浓度的Aβ25-35作用24 h，每个浓度设4个复孔L，同时设与实验孔平行的空白对照，最后比色时以对照孔调零。共同孵育24 h后更换培养基，每孔加入180μl的培养基和20μl的MTT(5 mg／ml)，置37℃、5％CO2培养箱培养4 h，弃培养液，每孔加入200μl DMSO，37℃孵育30 min，至结晶物充分溶解。在多功能酶标仪上测定570nm的吸光度(D570)，其与对照吸光度的比值作为相对细胞活力。
　　4 流式细胞仪检测将细胞接种于24孔板，待达到80％融合时，按下列分组进行实验：A.对照组，B. Aβ25-35（25μmol/L），C. Aβ25-35（25μmol/L）+鹿茸多肽（400mg/ml）［3］，D.照射Aβ25-35（25μmol/l）+NGF（20ng/ml）组。各组均6复孔。将24h以后各组细胞用0.25%胰蛋白酶消化，1000 r/min 离心5min，弃上清；用500μl 5mmol/L EDTA/0.01mol/L PBS洗涤细胞；再加入50μl 10g/L RNaseA，室温下孵育30min；最后加入500μl 100mg/LPI染色液，旋转混匀，置4℃避光孵育30min后，流式细胞仪测定。
　　5 免疫细胞化学染色将1cm×lcm盖玻片经浸酸及消毒等处理后，放入24孔培养板中，加入10倍稀释的多聚赖氨酸液，置于CO2 孵箱中1h；弃去多聚赖氨酸液，用DMEM培养基洗一次，将各组细胞悬液分别接种于各孔，继续培养24h；弃去原培养液，用37℃预热的0.1mol/L PBS轻洗3次；余按免疫组织化学试剂盒说明操作。
　　三 统计方法
　　应用统计分析软件SPSS14.0分析数据，数据以均数±标准差(x±s)表示，两两比较采用t检验，P