基于转录组序列的芜菁SSR标记开发及应用

来源:优秀文章 发布时间:2023-04-25 点击:

李晓娟,赵文菊,赵孟良,邵登魁,马一栋,任延靖,*

(1.青海省农林科学院,青海 西宁 810016;

2.青海省蔬菜遗传与生理重点实验室,青海 西宁 810016)

芜菁(Brassicarapassp.rapa),属于十字花科薹属芜菁亚种,是药食兼用的蔬菜作物。芜菁安全无毒,营养丰富,可以长期食用[1]。近代药理研究还发现,芜菁具有抗衰老[2]、抗氧化[3]、降血脂[4]等功效,在食品和药用领域受到广泛关注[5]。

分子标记是以个体间遗传物质内核苷酸序列变异为基础的遗传标记,是DNA水平遗传多态性的直接反映,具有稳定性高、多态性丰富、适用于不同组织及生物发育的不同阶段、不影响目标性状的表达且不受环境影响等优点[6],目前DNA分子标记技术已有数十种,其中简单重复序列(simple sequence repeat,SSR)是20世纪80年代发展起来的一种DNA标记技术,具有多态性丰富、共显性遗传、广泛分布于基因组中等特点[7],近年来被广泛用于种质资源及品种的遗传多样性分析和亲缘分析、质量性状的精细定位及杂交种纯度的鉴定等方面。

在十字花科蔬菜中,SSR标记也被广泛应用于上述几个方面,在白菜中,李桂花等[8]利用SRAP和SSR分子标记对41份小白菜进行了遗传多样性和亲缘关系分析,在遗传相似系数0.58处可将41份小白菜材料分为两大类;
徐营莉等[9]利用72对SSR分子标记检测了5个白菜类优势品种的种子纯度,结果表明,72对SSR引物中筛选出5对具有多态性,能够将父本和杂交种分开;
何晓丽等[10]利用SSR分子标记与农艺性状结合,分析了54份类型差异大、有南方特色的不结球白菜,在遗传距离0.6处将54份不结球白菜分为了3个类型。在芥菜中,李永平等[11]利用芥菜转录组信息挖掘SSR分子标记,并随机选取50对引物扩增44份芥菜种质,结果显示,SSR标记效率高、扩增条带性丰富;
颜新林等[12]构建了基于SSR标记的芥菜品种鉴定技术体系,最终筛选出24对SSR引物作为核心引物用于芥菜品种真实性快速鉴定和遗传多样性分析;
胡齐赞等[13]利用14对SSR分子标记对81份地方芥菜种质资源进行了多样性分析,将这些种质分为了2个类群。

目前关于芜菁在基因组水平上的遗传多样性的研究还未见报道,本研究利用转录组数据开发适合芜菁的SSR分子标记,并对其遗传多样性进行研究,为今后芜菁种质资源的评价和亲缘关系鉴定奠定理论基础。

1.1 试验材料

本研究收集了50份芜菁种质资源,具体信息见表1。

1.2 试验方法

1.2.1 转录组测序

采集芜菁种质资源W21和W25的不同发育时期的样品,每个样品3个重复,每个重复包含6个单株,委托武汉迈特维尔生物科技有限公司进行转录组测序分析。建库的方法参考公司已有的流程,首先获取芜菁的mRNA,随后加入片段化缓冲液将RNA打断成短片段,以短片段RNA为模板,用六碱基随机引物合成第一链cDNA,然后加入缓冲液、dNTPs和DNA 聚合酶I合成二链cDNA,随后进行双链cDNA的纯化,纯化的双链cDNA再进行末端修复、加A尾并连接测序接头,然后用AMPure XP beads进行片段大小选择,最后进行PCR富集得到最终的cDNA文库,获得的cDNA文库首先进行检测,检测方法包括使用Qubit2.0进行初步定量,使用Agilent 2100对文库的插入片段进行检测,插入片段符合预期后采用q-PCR方法对文库的有效浓度进行准确定量,库检合格后,用Illumina HiSeq平台进行测序[14]。

1.2.2 基因组DNA的提取

试验材料种植于青海大学农林科学院园艺所1号试验基地内,待芜菁成熟时选取芜菁新鲜的幼嫩叶片,液氮冷冻研磨,采用改良的CTAB法[15]提取基因组DNA。采用1.2%琼脂糖凝胶电泳检测DNA质量,-20 ℃保存备用。

1.2.3 引物设计与合成

采用MISA软件对芜菁转录组的Unigene基因进行SSR检测,搜索条件为单碱基(mono-nucleotide)重复SSR、双碱基(di-nucleotide)重复SSR、三碱基(tri-nucleotide)重复SSR、四碱基(tetra-nucleotide)重复SSR、五碱基(penta-nucleotide)重复SSR和六碱基(hexa-nucleotide)重复SSR,最低重复次数分别为10、6、5、5、5、5次。从芜菁10条染色体上各随机选择3条unigenes序列,利用Primer3软件设计引物,随机挑选的30对引物委托生工生物工程(上海)股份有限公司进行合成。

表1 供试材料信息

1.2.4 PCR扩增及结果检测

20 μL PCR反应体系包括:DNA模板1 μL,2×EasyTaqPCR SuperMix 5 μL,上下游引物(10 mmol·L-1)各0.5 μL,ddH2O 7 μL。PCR扩增程序为:95 ℃预变性5 min;
94 ℃变性30 s,55~58 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,35个循环;
72 ℃延伸10 min,4 ℃保存。采用8%非变性聚丙烯酰胺进行电泳检测。

1.2.5 数据统计

采用人工读带的方法,将聚丙烯酰胺电泳图上可重复的清晰条带记为“1”,同一位置条带较弱或者无条带的记为“0”,以此建立原始数据的0-1矩阵。通过Popgene1.31和PIC-CALC软件进行SSR位点的遗传多样性分析,利用NTSYS-pc1.0软件进行聚类分析。

2.1 芜菁转录组中SSR位点的分布及特点

通过对芜菁的253 720条unigene序列(序列总长为250 929.08 kb)进行分析发现,在63 553条unigene序列中含有79 716个SSR位点,其中13 247条unigene中含有2个或2个以上SSR位点。SSR的发生频率(含SSR的unigene基因数/总unigene条数)为25.05%,平均每3.15 kb出现1个SSR,分布频率(SSR个数与总unigene条数之比)31.42%。SSR位点搜索结果显示,有单一SSR位点(每个位点仅包含一种类型的SSR)和复杂SSR位点(每个位点包含至少两种类型的SSR)两种类型,以单一SSR位点为主,有54 482个,占比68.35%,其中单核苷酸重复是主要类型,占总SSR位点的31.1%;
其次是三核苷酸和二核苷酸重复,分别占19.46%和16.88%;
四核苷酸、五核苷酸及六核苷酸重复类型数量最少,分别为0.58%、0.16%和0.17%。所有单一SSR位点中,10次重复的SSR位点最多,共16 979个,占总单一SSR位点数的31.16%;
9次重复的SSR位点最少,只有1 650个,仅占总数的3.03%(表2)。芜菁SSR位点长度从10~308 bp不等,总长1 508 444 bp,平均长度18.92 bp;
其中长度在10~24 bp的SSR位点数量最多,有71 348个,占总数的89.50%,长度>25 bp的有8 368个,占总数的10.50%。

表2 芜菁单一SSR的类型、数量及分布特征

2.2 芜菁转录组SSR基序重复类型和频率特征

从芜菁转录组SSR核苷酸基序类型(表3)看,54 482个SSR位点包括266个重复基元,单核苷酸至六核苷酸重复类型分别有4、12、60、81、54和55种。根据碱基互补配对原则和阅读起始碱基顺序的差异[16],对每种长度类型的重复基元进行同类兼并后,单、二、三、四、五、六核苷酸重复基元类型分别为2、4、10、26、26和44个,单核苷酸重复基序最多,包括A/T和C/G,其中A/T数量最多,占总SSR位点的45.24%;
二核苷酸重复中,AG/GT数量最多,有9 288个,占总SSR位点的17.05%;
三核苷酸重复中,AAG/CTT和AGG/CCT数量最多,分别有5 054和2 656个,占总SSR位点的9.28%和4.88%;
四、五、六核苷酸重复中,基序数量较多,没有发现数量上有较为显著的基序类型(表3)。

表3 芜菁SSR基序类型分布

2.3 引物筛选及应用

从分布在芜菁10条染色体上SSR引物中随机选30对(表4),以50份芜菁叶片DNA为模板,进行PCR扩增,通过聚丙烯酰胺电泳检测扩增结果(图1)。30对引物最终均获得了多态性高、条带清晰的结果,共扩增出多态性条带126条,平均每对引物扩增出4.2条,平均多态率100%。

表4 芜菁SSR引物序列及扩增结果

序号同表1。The numbers of 1-50 were the same as in Table 1.图1 部分引物在50份供试材料的电泳结果Fig.1 Electrophoresis result of 50 tested materials with partial primers

扩增条带最多的引物是Cluster-30924.76636,为13条,最少的是Cluster-30924.104122、Cluster-30924.109584、Cluster-30924.120390、Cluster-30924.22191、Cluster-30924.48364和Cluster-30924.93982,只有1条。根据电泳检测扩增结果,最终得到24对多态性高、条带清晰的芜菁SSR引物,占总引物的80%。

2.4 遗传多样性分析

遗传多样性分析结果见表5,24对SSR引物在50份芜菁材料中共扩增获得了101个等位基因,每个位点等位基因数(Na)为2~7个,平均每个位点等位基因数4.21个,平均有效等位基因数(Ne)为1.4817个,有效等位变异率(有效等位基因数占观测等位基因数的比例)为35.19%。其中引物Cluster-30924.164312的有效等位基因数最多为1.856 3个,引物Cluster-30924.87846的有效等位基因数最少为1.020 3个。期望杂合度(h)的平均值是0.287 0,最大位点是Cluster-30924.164312,最小位点是Cluster-30924.87846,变化范围是0.019 9~0.455 1;
多样性指数(I)分布在0.056 2~0.646 0,平均值为0.438 5;
多态性信息含量(PIC)变化范围为0.038 4~0.914 7,平均为0.569 1,其中有14对引物的多态性信息含量大于0.5,属于高多态性引物,占总引物数的46.67%。结果表明,通过24对引物能够揭示50份芜菁资源的遗传多样性。

2.5 聚类分析

根据30对引物的扩增结果,采用最大似然法对50个芜菁材料进行聚类分析。结果可知(图2),50个供试芜菁材料的遗传背景较为复杂。在遗传距离大于20的地方,将50份芜菁材料分为四大类,第一类包含7份材料,分别是W22、IC22、T17、1402、W25、IC23和IC28,这7份材料在形态学上差异极大;
第二类包括40份材料,占总供试材料的80%,第二类又可以分为两小类,分别包含28份和12份材料;
第三类包括了2份材料,分别为T4和NS1;
第四类仅包括1份材料,IC9。

表5 二十四对SSR引物的遗传参数

图2 五十份芜菁材料SSR标记的聚类分析Fig.2 Cluster analysis of 50 varieties of the turnip based on SSR markers

芜菁为十字花科芸薹属芸薹种芜菁亚种能形成肉质根的2 a生草本植物,具有很多重要的遗传特性[17],它是具有较长历史的药食同源类植物,不仅可提供人体必需的各种氨基酸,还可降低各种疾病的发病率,提高免疫力。因此对芜菁进行遗传多样性分析,是很有必要的。

转录组测序能够快速、准确地获得物种全转录本序列信息,不依赖于物种的全基因组信息,且价格低廉,在不同物种的分子标记开发中已被广泛应用[18-19],而SSR标记是很好的共显性标记,多态性丰富且位点单一稳定,标记带型简单,是很好的锚定标记,有助于染色体的归并和不同连锁群的整合[20],转录组序列多集中在功能基因上,因此基于转录组数据开发的SSR标记有利于后期与重要性状进行关联分析,这也为分子标记辅助育种工作中亲本选育过程节约了时间和成本[21]。因此SSR标记被广泛应用于各类蔬菜和水果中,张春红等[22]利用SSR标记分析蓝莓(Vacciniumcorymbosum)现有品种种质的遗传多样性,发现品种间遗传差异较丰富,利用UPGMA聚类以及结合不同类型种质的系谱分析,发现分类与品种种质的遗传成分相似有一定的相关;
刘新雨等[23]利用大蒜(Alliumsativum)转录组数据进行SSR分子标记分析,在遗传相似系数0.756 9处,35份大蒜资源可被分成5大类群;
杨亮等[24]为探究收集于国内外不同番茄(Solanumlycopersicum)种质资源的亲缘关系,选用48对SSR引物对856份番茄材料进行遗传多样性及群体结构分析,根据番茄果实大小将其分为野生番茄(7份)、樱桃番茄(207份)及栽培型番茄(642份)3大类群,通过群体结构分析将856份材料划分为4个类群,两种类群划分有相似的结果。李延龙等[25]利用MISA软件筛选韭菜(Alliumtuberosum)全长转录组测序检测出的SSR位点,设计了3 311对SSR引物,随机选取164对引物(78.85%)进行扩增试验,39对引物在24株韭菜中表现出多态性种质资源。

本研究对芜菁转录组序列进行了SSR位点检测与信息分析,并通过PCR扩增检测引物有效性和多态性。研究结果表明,在63 553条unigene序列中含有79 716个SSR位点,其中13 247条unigene中含有2个或2个以上SSR位点。SSR的发生频率为25.05%,平均每3.15 kb出现1个SSR,分布频率为31.42%。通过聚丙烯酰胺电泳检测扩增结果显示,30对引物最终均获得了多态性高、条带清晰的结果,共扩增出多态性条带126条,平均每对引物扩增出4.2条,平均多态率100%。根据电泳检测扩增结果,最终得到24对多态性高、条带清晰的芜菁SSR引物,占总引物的80%,24对SSR引物在50份芜菁材料中共扩增获得了101个等位基因,每个位点等位基因数(Na)为2~7个,平均每个位点等位基因数4.21个,平均有效等位基因数(Ne)为1.481 7个,有效等位变异率为35.19%,表明筛选出的引物能较好地表现50份芜菁的遗传多样性。

综上所述,本研究采用SSR分子标记方法,揭示了芜菁的遗传多样性,并筛选出了适合芜菁种质资源评价鉴定的EST-SSR引物,在芜菁的资源多样性分析、杂交种鉴定及遗传图谱的构建应用中具有重要意义。

猜你喜欢芜菁核苷酸等位基因单核苷酸多态性与中医证候相关性研究进展世界科学技术-中医药现代化(2022年3期)2022-08-22徐长风:核苷酸类似物的副作用肝博士(2022年3期)2022-06-30不同播种密度对芜菁块根性状及产量的影响蔬菜(2022年2期)2022-02-17亲子鉴定中男性个体Amelogenin基因座异常1例智慧健康(2021年17期)2021-07-30广东汉族人群D18S51基因座等位基因分型现象分析国际检验医学杂志(2021年7期)2021-04-15芜菁种植方法电脑迷(2020年7期)2020-08-07广东汉族人群Penta D基因座off-ladder稀有等位基因分析中国产前诊断杂志(电子版)(2020年1期)2020-05-21Acknowledgment to reviewers—November 2018 to September 2019Journal of Sport and Health Science(2019年6期)2019-11-26芜菁离体培养再生体系建立新疆农业科学(2018年8期)2018-10-23WHOHLA命名委员会命名的新等位基因HLA-A*24∶327序列分析及确认现代检验医学杂志(2016年5期)2016-08-20推荐访问:芜菁 转录 序列
上一篇:玉米C型胞质不育系S37-2败育的生物学与生理生化机制分析
下一篇:本刊版权声明

Copyright @ 2013 - 2018 优秀啊教育网 All Rights Reserved

优秀啊教育网 版权所有