酪蛋白胶束对原花青素稳定性的影响

王楠，杨敏，郑杰，秦娟娟

(甘肃农业大学 理学院，甘肃 兰州，730070)

原花青素(proanthocyanidins，PCs)是一类广泛存在于植物中的天然多酚类化合物，分子结构中含多个酚羟基，具有广泛的药理学活性，如抗氧化、抗肥胖、抗糖尿病等。而且，PCs成本低、安全性高，在医药、食品等方面具有较高的利用价值。然而，PCs稳定性较差，在加工过程中易受到光照、温度、pH、氧化剂、金属离子等因素影响。因此，提高PCs稳定性是亟待解决的关键问题。目前，提高PCs稳定性的方法主要有化学法和物理法，其中化学法存在潜在的安全问题，物理方法更为常用。物理方法主要是通过加入保护气、辅色素、与生物大分子形成复合物等，以提高PCs的稳定性[1]。

生物大分子负载提升PCs稳定性是基于PCs和大分子间以氢键、疏水作用、静电作用等次级键结合，既不会影响PCs天然结构，又不会产生新的物质，安全性高，是提高PCs稳定性的主要手段。蛋白质、糖类、脂类等生物大分子是负载PCs的主要基质，负载后PCs稳定性提升显著，如β-环糊精添加量为2 500 mg/L时，可显著提高紫薯花色苷的贮存稳定性[2]；
葡萄籽花色苷与磺基丁基醚-β-环糊精形成的包合物不仅提高了花色苷的溶解度和稳定性，而且保留了花色苷的抗糖尿病作用[3]。

蛋白质来源广泛，价格低廉，不仅生物相容性好，而且营养价值高，是活性小分子主要载体；
其中乳蛋白因其制备工艺简单、成本低廉而成为蛋白质中的首选基质。乳蛋白主要由乳清蛋白和酪蛋白组成，有文献指出，乳清蛋白-PCs复合物的热稳定性大于游离PCs的热稳定性[4]。乳清蛋白和酪蛋白在热、氧化和光照条件下能使PCs的降解量减少，对其稳定性有较好的改善作用[5]；
α-酪蛋白和β-酪蛋白均能提高蓝莓花青素稳定性，并保护其抗氧化能力[6]。由此可见，利用乳蛋白负载可提升PCs的稳定性。

乳中，酪蛋白占总蛋白的80%，由4种不同类型的酪蛋白(αs1，αs2，β和κ，质量比例约为4∶1∶4∶1)组成，这些酪蛋白与磷酸钙自组装成一种纳米级复合物，称为酪蛋白胶束(micellar casein，MC)，其结构特殊，具有疏水内部和亲水表面[7]。本团队前期研究发现，MC对活性小分子具有较高的结合能力，如在37 ℃条件下，MC与大黄素、咖啡酸和咖啡酸苯乙酯的结合常数分别为5.470×104、8.12×104和8.93×106[8-9]，有利于提高疏水分子的溶解性和生物利用度。然而，MC对PCs稳定性影响研究报道较少。

本文以MC为基质，以PCs为配体，制备PCs-MC复合物，利用紫外-可见光谱、荧光光谱、傅里叶变换红外光谱(Fourier transform infrared spectroscopy，FTIR)、X-射线衍射(diffraction of x-rays，XRD)、粒径和Zeta电位等表征复合物结构，并分析热处理、超声处理、添加H2O2和金属离子对PCs-MC复合物中PCs稳定性的影响规律及作用机制，为PCs稳定性提升提供参考依据。

1.1 材料与试剂

PCs，上海麦克林生化科技有限公司；
FeCl3、ZnCl2，烟台市双双化工有限公司；
香草醛，兰州嘉特星工贸有限公司；
其他试剂均为分析纯。

新鲜牛乳购自兰州天天鲜乳制品有限责任公司，离心脱脂(4 000×g，30 min)，过100 kDa有机膜，浓缩液冷冻干燥制得胶束酪蛋白，4 ℃冷藏备用[9]。

1.2 仪器与设备

RF-5301PC荧光分光光度计，日本日立仪器有限责任公司；
Nicolet iS50 FTIR光谱仪，美国赛默飞世尔科学公司；
HX-T涡旋混合器，中国金坛百塔鑫宝仪器有限公司；
XD3 X射线多晶衍射仪，北京普析通用仪器有限责任公司；
STA 449 F5 TG-DSC热分析仪，德国耐驰仪器制造有限公司；
FD-1-50真空冷冻干燥机，北京博医康实验仪器有限公司；
H1850台式高速离心机，湖南湘仪实验室仪器开发有限公司；
UV-1780双光束紫外可见分光光度计，岛津仪器有限公司；
BT-Zeta100 Zeta电位/纳米粒度/分子量分析仪，丹东百特仪器有限公司。

1.3 实验方法

1.3.1 PCs-MC复合物制备

用0.05 mol/L pH 6.86磷酸盐缓冲液溶解MC，获得3 g/L MC溶液。将适量PCs用二甲基亚砜助溶后置于0.05 mol/L pH 6.86磷酸盐缓冲液中，涡旋振荡使其充分溶解，制得浓度分别为2、4、6、8 mmol/L的溶液。上述PCs溶液与MC以体积比1∶1混合，37 ℃水浴中磁力搅拌加热20 min，制得PCs-MC复合物，备用。取一部分复合物溶液进行冷冻干燥，获得粉末状复合物，冷藏备用。

1.3.2 紫外-可见光谱分析

PCs-MC复合物溶液用0.05 mol/L pH 6.86磷酸盐缓冲液稀释30倍，用紫外-可见分光光度计进行全波长扫描，扫描范围为190～500 nm。

1.3.3 荧光光谱分析

PCs-MC复合物溶液用0.05 mol/L pH 6.86磷酸盐缓冲液稀释10倍，用荧光分光光度计测量，测量范围为290～500 nm，激发波长为280 nm，激发狭缝为10 nm，发射狭缝为5 nm。

1.3.4 FTIR分析

参照文献[10]，将PCs-MC复合物粉末置于ATR元件，用FTIR仪测量，对酰胺Ⅰ带(1 600～1 700 cm-1)进行二级结构含量分析。

1.3.5 XRD 分析

参照QIN等[8]的方法，将PCs-MC复合物粉末用X射线多晶衍射仪在Cu Kα辐射下进行XRD扫描。

1.3.6 粒径和Zeta电位分析

参照LI等[11]的方法，将PCs-MC复合物溶液用0.05 mol/L pH 6.86磷酸盐缓冲液稀释10倍，使用BT-Zeta100 粒度仪测定粒径及电位。

1.3.7 差示扫描量热法(thermogravimetric analysis-differential scanning calorimetry，TG-DSC)分析

参照QIN等[8]的方法，使用TG-DSC热分析仪测定PCs-MC复合物粉末的热稳定性。

1.3.8 PCs稳定性分析

1.3.8.1 PCs含量的测定

PCs含量测定参考WEN等[12]报道的方法，取0.5 mL样品，加入4.5 mL体积分数2%盐酸-10 g/L香草醛乙酸溶液中，在37 ℃恒温水浴锅中加热30 min后冷却至室温，使用紫外-可见分光光度计在500 nm处测量吸光度，绘制标准曲线(图1)。

a-PCs;b-PCs-MC图1 游离PCs和PCs-MC复合物中PCs的标准曲线Fig.1 Standard curves of free PCs and PCs in PCs-MC complexes

PCs的稳定性用保留率表示，计算如公式(1)所示[12]：

(1)

式中：c0,PCs的初始浓度，mmol/L；
ct,t时刻PCs的浓度，mmol/L。

1.3.8.2 温度对PCs稳定性的影响

将PCs-MC复合物溶液及相同浓度游离PCs溶液分别置于4 ℃冰箱、37、50和65 ℃水浴中恒温60 h，每隔12 h取样测定PCs保留率。

1.3.8.3 金属离子对PCs稳定性的影响

将PCs-MC复合物溶液及相同浓度游离PCs溶液分别与0.01 mol/L FeCl3和0.01 mol/L ZnCl2溶液以体积比1∶1混合均匀，室温静置150 min，每隔30 min取样测定PCs保留率。

1.3.8.4 H2O2对PCs稳定性的影响

在PCs-MC复合物溶液及相同浓度游离PCs溶液中分别加入一定量H2O2溶液，使其终体积分数为0.006%和0.024%，室温静置75 min，每隔15 min取样测定PCs保留率。

1.3.8.5 超声处理PCs稳定性的影响

将PCs-MC复合物溶液及相同浓度游离PCs溶液进行超声处理50 min，频率为20 kHz，振幅为30%，采用间歇超声模式(工作5 s停1 s)，每隔10 min取样测定PCs保留率。

1.3.9 PCs降解动力学分析

根据文献[13]，采用一级动力学模型分析PCs降解动力学，如公式(2)所示：

lnct=-kt+lnc0

(2)

式中：c0,PCs的初始浓度，mmol/L；
ct,t时刻PCs的浓度，mmol/L；
k,降解速率常数，h-1或min-1；
t,时间，h或min。

1.4 数据统计分析

所有试验重复3次，试验数据采用Excel 2010处理并用平均数±标准偏差表示，用Origin Pro 9.0作图，用IBM SPSS Statistics 22进行差异显著性分析，数据间差异显著分析采用Duncan法。

2.1 PCs-MC复合物结构表征

2.1.1 紫外-可见光谱分析

由图2-a可知，随着游离PCs浓度的增加， 280 nm处的吸光度逐渐增大。由图2-b可知，随着PCs浓度的增加，PCs-MC复合物在280 nm附近的吸收峰不断增大，且最大吸收波长从277 nm红移到280 nm，表明MC二级结构发生改变，疏水氨基酸残基向亲水微环境转变，证明PCs和MC发生相互作用，形成了复合物。另一方面，MC疏水性氨基酸残基微环境发生变化，说明PCs与MC可能以疏水作用结合。WANG等[14]研究发现，随着花青素浓度的增加，黑豆分离蛋白的吸光度逐渐增加，且最大吸收波长从272 nm红移到279 nm，与本研究结果基本一致。

a-游离PCs；
b-PCs-MC复合物图2 游离PCs和PCs-MC复合物的紫外光谱图Fig.2 UV-Vis spectra of PCs and PCs-MC complexes

2.1.2 荧光光谱分析

PCs-MC复合物的荧光光谱如图3所示。MC在336.4 nm处有最大荧光值(1 682.6)；
随着PCs浓度的增加，最大荧光强度逐渐降低。当PCs 浓度为4 mmol/L时，复合物的荧光强度降低到59.0，表明PCs使MC中色氨酸、酪氨酸残基微环境发生改变，对MC有荧光猝灭作用，再次证实PCs与MC发生相互作用，形成PCs-MC复合物。LI等[15]研究表明，PCs通过静态猝灭抑制乳铁蛋白的固有荧光，乳铁蛋白和PCs之间主要由疏水作用和氢键形成复合物。MA等[16]发现，PCs B1、B2、B3和A2可通过静态猝灭抑制β-酪蛋白的固有荧光，PCs C1可通过动态和静态猝灭抑制β-酪蛋白的固有荧光，PCs与β-酪蛋白的结合作用主要是疏水作用、范德华力和氢键。可见，PCs更易于与蛋白质形成疏水作用。

图3 PCs-MC复合物的荧光光谱图Fig.3 Fluorescence spectra of PCs-MC complexes

2.1.3 FTIR分析

对酰胺I带进行二级结构含量分析，结果如图4-b所示。添加PCs后，MC中β-折叠结构含量显著降低，转角含量显著增加(P<0.05)。当PCs添加量为1～3 mmol/L时，各二级结构含量随PCs浓度增加变化不显著(P>0.05)。当PCs浓度为4 mmol/L时，复合物中转角结构含量最高，β-折叠含量最低，且与其他样品差异显著(P<0.05)。由此可见，添加PCs后，MC二级结构发生改变，这与紫外-可见光谱研究结果一致(图2)。

a-FTIR图；
b-二级结构含量图4 PCs-MC复合物的FTIR图和二级结构含量Fig.4 FTIR spectra and secondary structure conctents of PCs-MC complexes注：不同小写字母表示差异显著

2.1.4 XRD分析

PCs-MC复合物的XRD如图5所示。游离MC和PCs出现较宽的峰，说明二者均呈现无定形结构。PCs-MC复合物在32°处出现一个新的晶体衍射峰，表明PCs与MC形成复合物。SHADDEL等[18]研究发现，加入花青素后，以明胶和阿拉伯胶为基质的微胶囊晶体结构发生改变，形成明显的晶体衍射峰，与本研究结果一致。

图5 PCs-MC复合物XRD图Fig.5 XRD patterns of PCs-MC complexes

2.1.5 粒径及电位分析

由图6-a可知，随着PCs浓度的增大，游离PCs和PCs-MC复合物粒径都逐渐增大，且PCs-MC复合物粒径小于游离PCs粒径。由于PCs为聚合物，在水中溶解度不高，多形成团聚体，因此粒径较大。将PCs添加到MC溶液中后，PCs与MC以物理相互作用结合，有效改善了PCs的团聚，使其分散为小分子，因此复合物粒径显著小于游离PCs(P<0.05)。由于MC为近球形粒子，PCs结合于其表面，因此随着PCs结合量的增加，复合物粒径略有增大。YAN等[19]研究发现，与樟仁分离蛋白相比，樟仁分离蛋白-酚复合物的粒径更大，表明蛋白质-酚复合物的形成，与本文研究结果一致。

a-粒径；
b-Zeta电位图6 PCs-MC复合物的粒径和Zeta电位Fig.6 Particle size and Zeta-potential of PCs-MC complexes注：图中不同小写字母表示PCs-MC样品间差异显著；
不同大写字母表示PCs样品间差异显著(下同)

由图6-b可知，在pH 6.86的缓冲体系中，PCs带负电荷，1 mmol/L时电位值为-8.8 mV。相同体系中，MC带负电荷，电位值为-18.0 mV。随着PCs浓度的增大，PCs-MC复合物的负电量有所增加，表明PCs改变了MC二级结构，形成PCs-MC复合物，且PCs-MC复合物粒子间静电斥力增强，与红外光谱分析结果一致(图4)。LI等[11]研究发现，当儿茶素浓度增加到1.5 g/L时，复合物的电位值增大了1倍多。

2.1.6 TG-DSC分析

由图7-a中可知，在80 ℃左右出现吸热峰，是由于水分蒸发所致。PCs-MC复合物在350 ℃附近出现较大放热峰，为复合物热分解所致，与文献[18]的研究结果一致。

由图7-b可知，PCs和MC第一次失重在80 ℃附近，为水分蒸发所致；
第二次失重在275～350 ℃，表明大分子热分解。PCs-MC复合物在该阶段的质量损失低于MC，且损失率随着PCs含量的增加而降低，说明复合物之间形成了相互作用，减缓了MC的热分解。可见，PCs-MC复合物的热稳定性高于游离MC和PCs。有研究指出，微胶囊化的花色苷质量损失更加缓慢，卡拉胶对花色苷的降解起到保护作用，与本文研究结果相似[20]。

a-DSC；
b-TG图7 PCs-MC复合物的DSC和TG曲线Fig.7 DSC and TG curves of PCs-MC complexes

2.2 温度对PCs-MC复合物稳定性的影响

2.2.1 不同温度下PCs保留率分析

不同温度处理下的PCs保留率如图8所示。

a-4 ℃；
b-37 ℃；
c-50 ℃；
d-65 ℃图8 不同温度处理下PCs保留率Fig.8 Retention rate of PCs with different heat treatment

由图8-a可知，4 ℃贮藏时，复合物中PCs保留率低于游离PCs，这可能是由于低温下酪蛋白胶束结构发生改变，部分β-酪蛋白析出，PCs可能进入酪蛋白胶束内部，从而难以检测到[21]。另一方面，复合物中PCs浓度越大，其保留率越大，这可能是因为PCs之间形成π-π堆积等作用，进而结构稳定性提升[22]。由图8-b～图8-d可知，37、50和65 ℃处理时，MC对PCs均起到保护作用，复合物中PCs降解率明显低于游离PCs，与QUAN等[2]的研究结果一致。由于PCs分子以特定基团与MC形成物理相互作用，使其结构稳定性提升，在外界环境影响下降解减缓，从而提高了PCs的保留率。就游离PCs而言，浓度为1 mmol/L时PCs保留率最低，可见PCs分子之间的相互作用也有利于其结构稳定，但这种作用弱于MC与PCs之间的相互作用。与其他温度相比，随着贮藏时间的延长，4 ℃下游离PCs和复合物中PCs保留率最高且变化缓慢，可见低温贮藏有利于保持PCs的稳定性。

有文献指出，β-环糊精与花青素之间的相互作用会促进花青素的降解[23]，与本文研究结果不同，可能是由于原料间的相互作用机理不同所导致。综上所述，MC与PCs结合有利于改善PCs在中高温环境下的稳定性。

不同温度下PCs一级降解动力学拟合结果如表1所示。不同温度处理下，游离PCs和复合物中的PCs降解均符合一级降解动力学，拟合度较高，与WANG等[17]报道一致。

表1 不同影响因素下PCs的一级降解速率常数(k)和相关系数(R2)Table 1 Degradation rate constants (k) and correlation coefficients (R2) of PCs under different treatment

2.2.2 PCs-MC复合物粒径和电位分析

为了进一步解释MC对PCs稳定性的保护作用，选取50 ℃下不同贮藏期的PCs-MC复合物为样品，进行粒径和电位分析，结果如图9所示。由图9-a可知，随着热处理时间的延长，游离PCs粒径减小；
且浓度越小，粒径降低幅度越大，说明PCs对温度敏感，在热处理下发生降解。就PCs-MC复合物而言，其粒径随热处理时间延长虽呈现出增大趋势，但增大幅度较小。电位方面，PCs-MC复合物电荷为-20 mV左右，是较为稳定的体系。随着热处理时间的延长，游离PCs降解后，负电荷增加，而复合物的电荷变化规律性不强，整体变化程度较小。由此可见，MC与PCs的相互作用有效缓解了PCs的热降解。

a-PCs-MC复合物粒径；
b-PCs-MC复合物Zeta电位图9 50 ℃处理下PCs-MC复合物的粒径和Zeta电位Fig.9 Particle size and Zeta-potential of PCs-MC complexes at 50 ℃

2.3 Fe3+和Zn2+对PCs-MC复合物稳定性的影响

2.3.1 PCs保留率分析

Fe3+和Zn2+处理下PCs保留率如图10所示。由图10-a可知，加入Fe3+后，游离PCs保留率高于复合物中PCs保留率，且PCs浓度越小，复合物中PCs保留率越低，如1 mmol/L时游离PCs和复合物中PCs保留率最低，加入Fe3+150 min后，游离PCs保留率为48.8%，而复合物中PCs保留率为37.1%。由图10-b可知，加入Zn2+150 min后，浓度为1 mmol/L的游离PCs和复合物中PCs保留率分别为76.2%、68.8%，其变化趋势与Fe3+的影响一致，均表现为MC促进了PCs的降解，与RATANAPOOMPINYO等[24]的研究报道一致。文献报道指出，金属离子可以与PCs形成螯合物，从而增加其结构稳定性[24]。与MC非共价结合后，降低了PCs与金属离子的螯合能力，因此降低了其稳定性。PATRAS等[25]研究发现，Fe3+提高了矢车菊素-3-O-葡萄糖苷在60 ℃加热80 min的稳定性。另外，由表1可以看出PCs在Fe3+和Zn2+存在时的降解动力学符合一级反应。根据文献报道，矢车菊素-3-O-葡萄糖苷在Fe3+存在下的一级降解速率常数为0.001 53(min-1)，与本文研究结果相似[24]。

a-Fe3+对PCs保留率的影响；
b-Zn2+对PCs保留率的影响图10 Fe3+和Zn2+对PCs保留率的影响Fig.10 Effect of Fe3+ and Zn2+ on the retention rate of PCs

2.3.2 Fe3+对PCs-MC复合物粒径和电位的影响

由图11-a可知，加入Fe3+后，游离PCs粒径迅速降低，可能是由于Fe3+与PCs螯合后结构发生改变，分子结构更紧凑所致。然而，PCs-MC复合物在Fe3+作用下粒径迅速增大，且随着时间的延长粒径越大，这可能是由于Fe3+与MC上特定的氨基酸残基或结合于MC上的PCs产生了螯合作用，将MC交联起来，形成更大的团簇结构。

由图11-b可知，加入Fe3+后，游离PCs体系电荷由负电变成正电，说明其与PCs产生了螯合作用；
而PCs-MC复合物体系依然为负电体系，且带电量随着时间的延长逐渐降低，说明MC间可能发生了交联。由此可见，MC降低PCs的金属离子稳定性，其本质在于阻碍了PCs与金属离子的螯合作用，而该作用有利于稳定PCs的醌式碱结构不受亲核试剂攻击[25]。虽然MC与PCs的疏水作用也有利于提高其结构稳定性，但该作用效果弱于螯合作用。

a-Fe3+处理下PCs-MC复合物粒径；
b-Fe3+处理下PCs-MC复合物Zeta电位图11 Fe3+处理下PCs-MC复合物的粒径和Zeta电位Fig.11 Particle size and Zeta-potential of PCs-MC complexes with Fe3+

2.4 H2O2对PCs-MC复合物稳定性的影响

2.4.1 不同H2O2浓度下PCs保留率分析

如图12所示，加入H2O2后，2种样品中PCs保留率都随时间的延长而降低，说明H2O2使PCs逐渐降解。

a-0.006% H2O2处理；
b-0.024% H2O2处理图12 不同浓度H2O2处理对PCs保留率的影响Fig.12 Retention rate of PCs with different concentrations of H2O2

另外，随着H2O2浓度的增大，PCs保留率减小。与游离PCs相比，相同条件下复合物中PCs保留率均较高。MC与PCs的非共价结合，保护了PCs结构稳定，使其难以被氧化；
而且，MC与 PCs结合后，其结构发生改变，可能将PCs包埋在肽链内部，使其不易与氧化剂接触，从而提高了稳定性。由此可见，MC对PCs在H2O2下的氧化降解有明显的抑制作用，与HE等[5]的研究报道一致。

同一浓度H2O2处理下，不同浓度样品中PCs保留率不同。其中，浓度为1 mmol/L时，H2O2处理后复合物中PCs保留率最高，浓度为2 mmol/L时PCs保留率最低，这可能是由于不同PCs浓度下，添加H2O2引起MC结构变化程度不同所致。当PCs浓度较低时，MC结构变化有利于将其包裹在分子内或分子间，从而提高其稳定性。H2O2存在下，PCs的降解符合一级降解动力学(表1)。有研究发现[26]，在H2O2处理条件下，蓝莓花色苷降解符合一级动力学方程，0.0%～2.0% H2O2条件下花色苷降解速率k为0.000 4～0.057 4 min-1，与本文研究相似。

2.4.2 H2O2对PCs-MC复合物粒径和电位的影响

由图13-a可知，加入H2O2后，虽然游离PCs粒径随时间延长呈减小趋势，但粒径较大，说明PCs 在氧化剂作用下团聚现象严重，可能是PCs氧化聚集。PCs-MC复合物粒径随时间变化不大，说明体系基本没有发生团聚现象，证实体系较为稳定。由图13-b可知，加入H2O2后，游离PCs和PCs-MC复合物的电位变化不大。

a-0.024% H2O2处理下PCs-MC复合物粒径；
b-0.024% H2O2处理下PCs-MC复合物Zeta电位图图13 0.024% H2O2处理下PCs-MC复合物粒径和Zeta电位Fig.13 Particle size and Zeta-potential of PCs-MC complexes with 0.024% H2O2

2.5 超声处理对PCs-MC复合物稳定性的影响

2.5.1 PCs保留率分析

由图14可知，超声处理下，MC促进了PCs的降解，这可能是由于超声处理不仅削弱了PCs与MC的相互作用，而且破坏了PCs分子间作用，使其稳定性降低。由表1可以看出，超声处理下PCs的降解符合一级降解动力学。

图14 超声处理对PCs保留率的影响Fig.14 Retention rate of PCs-MC complexes during ultrasound treatment

2.5.2 超声处理对PCs-MC复合物粒径和电位的影响

从图15-a可以看出，游离PCs在超声10 min时粒径明显减小(P<0.05)，但随着超声时间的延长粒径逐渐增大，可能是短时间超声促进了PCs的溶解，而长时间超声使其聚集。就PCs-MC复合物而言，超声处理对其粒径影响不大。由图15-b可知，超声处理对游离PCs和PCs-MC复合物的电位影响不大。可见，超声处理主要通过改变PCs分子间及PCs与MC之间的相互作用，从而影响PCs的稳定性。

a-超声处理下PCs-MC复合物粒径；
b-超声处理下PCs-MC复合物Zeta电位图15 超声处理时不同浓度PCs-MC复合物的粒径和Zeta电位Fig.15 Particle size and Zeta-potential of PCs-MC complexes during ultrasound treatment

以MC为载体，制备PCs-MC复合物，发现 PCs对MC有显著的荧光猝灭作用，且改变了MC的二级结构。XRD和FTIR光谱证实，PCs与MC形成复合物。MC对PCs的热稳定性影响与温度有关，其中MC降低了PCs在4 ℃时的稳定性，而提高了其在37、50、65 ℃时的保留率。另外，MC改善了PCs在H2O2作用下的稳定性。但是，在Fe3+、Zn2+作用下和超声处理时，PCs-MC复合物中PCs保留率低于游离PCs，可见MC促进了PCs的降解。综上所述，MC对PCs的稳定性影响与处理条件有关。