烧伤后增生性瘢痕组织中颗粒蛋白前体、环氧合酶2的表达水平及其与炎性因子的相关性▲

来源:优秀文章 发布时间:2023-03-10 点击:

黄 云 许喜生 陈 凯 李 佳

(郴州市第一人民医院烧伤整形外科,湖南省郴州市 423000)

增生性瘢痕(hypertrophic scar,HS)是烧伤伤口愈合的常见并发症,随着时间的推移,HS可导致患者身体活动受限(如挛缩、紧绷、僵硬等)、神经性症状(如疼痛、瘙痒等),甚至产生焦虑,严重影响烧伤幸存患者的身心健康和生活质量[1]。近年来,HS的治疗方法已有较大进展,然而HS一旦发生,很难通过非手术方式彻底清除[2]。因此,了解HS的发病机制,做到早期防治至关重要。颗粒蛋白前体(progranulin,PGRN)是一种多功能分泌蛋白,在细胞增殖、肿瘤发生及炎症反应调节中起重要作用,还广泛参与神经系统和其他系统的各种疾病,如胃炎、败血症、结肠癌等[3]。研究表明,PGRN对机体损伤后的修复过程具有重要的调控作用[4]。环氧合酶(cyclooxygenase,COX)也被称为前列腺素内氧化酶还原酶,目前发现COX包含2种异构体,分别为COX-1和COX-2,其中诱导型COX-2作为炎性反应的介质,参与多种病理生理过程,其表达水平在炎症刺激下呈增高趋势[5]。此外,瘢痕组织中COX的表达水平增高,使用相关药物阻断COX的表达可能是治疗病理性瘢痕的辅助手段[5]。因此,本研究检测PGRN和COX-2在烧伤后HS组织中的表达水平,分析其与炎性因子的相关性,初步探讨PGRN和COX-2在烧伤后HS中的作用机制。

1.1 临床资料 选取2018年9月至2019年9月在我院烧伤整形外科诊治的54例烧伤后HS患者,其中男性30例、女性24例,年龄18~48(28.59±7.8)岁;
肩背部和四肢烧伤32例、面颈部烧伤22例。纳入标准:(1)经临床和病理学检查确诊为烧伤后HS;
(2)瘢痕切除术前未接受其他瘢痕治疗;
(3)无家族性瘢痕增生史及金属元素接触史;
(4)病理检查提示无恶变。排除标准:(1)合并血液系统疾病者;
(2)依从性差者;
(3)合并瘢痕疙瘩者;
(4)合并皮肤疾病者;
(5)妊娠或哺乳期妇女;
(6)合并恶性肿瘤者;
(7)瘢痕组织局部感染者。本研究经过我院医学伦理委员会批准,所有患者均对本研究知情同意。

1.2 主要试剂与仪器 PGRN多克隆抗体(上海烜雅生物科技有限公司,货号:XY-KT-1824),COX-2多克隆抗体(上海群己生物科技有限公司,货号:PAB24809),山羊抗兔IgG(H+L)二抗工作液(上海碧云天生物技术有限公司,货号:A0277),辣根过氧化物酶标记的链霉素卵白素工作液、DAB试剂(北京索莱宝科技有限公司,货号:SE068、DA1010),苏木素染色液(百济神州生物药业有限公司,货号:C8470),TRIzol试剂盒(Thermo Fisher Scientific公司,货号:10296028),反转录试剂盒和AceQ qPCR SYBR® Green Mix(南京诺唯赞生物科技股份有限公司,货号:R133-01、Q511-02/03)。微量分光光度计(Thermo Fisher Scientific公司,型号:NanoDrop 2000c),电热恒温培养箱(上海跃进医疗器械有限公司,型号:HH-B11),立式冷藏柜(青岛海尔股份有限公司,型号:BCD-227B型),微型超速冷冻离心机(Beckman Coulter公司,型号:BEA21),石蜡切片机(江苏世泰实验器材有限公司,型号:RM2245),光学显微镜(日本Olympus公司,型号:CX23),实时荧光定量PCR仪(Bio-Rad公司,型号:CFX384)。

1.3 方法

1.3.1 标本获取:在瘢痕切除术过程中收集患者的HS组织样本0.5 g,同时留取患者植皮取皮时多余的正常皮肤组织标本0.5 g。将新鲜采集的一部分标本固定在10%的中性甲醛中,使用乙醇进行常规脱水,浸泡在二甲苯中,然后石蜡包埋,做成4 μm厚的切片待用。将其余部分标本置于-80 ℃液氮中保存待用。

1.3.2 免疫组织化学染色:将1.3.1中的切片进行常规脱蜡;
在0.01 mol/L枸橼酸钠缓冲液(pH=6.0)中煮沸(95 ℃)18 min进行抗原修复;
在切片上滴加3% H2O2室温孵育10 min以阻断内源性过氧化物酶的活性,采用PBS冲洗切片3次,每次3 min;
滴加正常兔血清孵育20 min,甩去多余液体;
滴加250 μL PGRN(稀释比1∶200)和250 μL COX-2多克隆抗体(稀释比1∶150),置于4 ℃冰箱孵育过夜,使用PBS冲洗切片3次,每次5 min;
滴加100 μL山羊抗兔IgG二抗工作液(稀释比1∶1 000),37 ℃孵育40 min,使用PBS冲洗切片3次,每次5 min;
滴加50 μL辣根过氧化物酶标记的链霉素卵白素工作液,37 ℃孵育30 min,使用PBS冲洗3次,每次5 min;
DAB显色,水洗后使用苏木素进行复染;
梯度乙醇脱水、透明、干燥,中性树胶封片,置于显微镜下观察。随机观察5个视野,计数100个细胞确定阳性细胞的百分比,阳性细胞的判定:PGRN主要定位于细胞质内,呈棕黄色颗粒状;
COX-2主要定位于细胞浆中,呈棕黄色颗粒、弥漫分布。结果判读:阴性指阳性细胞百分比<6%;
弱阳性指阳性细胞百分比为6%~<26%;
阳性指阳性细胞百分比为26%~49%;
强阳性指阳性细胞百分比>49%。其中弱阳性、阳性、强阳性均定义为阳性表达[6]。

1.3.3 实时荧光定量PCR:参照TRIzol试剂盒说明书步骤提取各组织的总RNA,然后参照反转录试剂盒说明书的操作步骤将RNA反转录合成cDNA。以cDNA为模板,使用AceQ qPCR SYBR® Green Mix进行实时荧光定量PCR。反应体系包括AceQ qPCR SYBR® Green Mix 5 μL,cDNA(50 ng/μL)1 μL,上下游引物(10 μM)各0.5 μL,ddH2O加至10 μL。反应条件:预变性95 ℃,90 s;
变性95 ℃,30 s,退火63 ℃,30 s,延伸72 ℃,15 s,共40个循环。以β-actin作为内参基因,采用2-ΔΔCt法计算PGRN、COX-2、白细胞介素(interleukin,IL)-6、IL-10、IL-1β及肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α,TNF-α)mRNA相对表达水平。每组实验重复3次。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成,序列见表1。

1.4 统计学分析 采用SPSS 25.0软件进行统计学分析。计量资料采用(x±s)表示,组间比较采用配对t检验;
计数资料采用例数(百分比)表示,组间比较采用χ2检验;
相关性分析采用Pearson检验。以P<0.05为差异有统计学意义。

2.1 HS组织与正常皮肤组织中PGRN、COX-2蛋白阳性表达率的比较 HS组织中的PGRN和COX-2蛋白阳性表达率均高于正常皮肤组织(均P<0.05),见表2。

表2 HS组织与正常皮肤组织中PGRN、COX-2蛋白阳性表达率的比较[n(%)]

2.2 HS组织与正常皮肤组织中PGRN、COX-2及炎性因子mRNA表达水平的比较 HS组织中PGRN、COX-2、IL-6、IL-1β、TNF-α 的mRNA表达水平均高于正常皮肤组织,IL-10 mRNA表达水平低于正常皮肤组织(均P<0.05),见表3。

表3 HS组织与正常皮肤组织中PGRN、COX-2及炎性因子的mRNA相对表达水平比较(x±s)

2.3 HS组织中PGRN、COX-2、炎性因子的mRNA表达水平的相关性 Pearson相关性分析结果显示,HS组织中PGRN mRNA表达水平与COX-2 mRNA表达水平呈正相关(r=0.489,P=0.003);
HS组织中PGRN和COX-2的mRNA表达水平与IL-6、IL-1β、TNF-α的mRNA表达水平均呈正相关,与IL-10的mRNA表达水平均呈负相关(均P<0.05)。见图1、表4。

表4 HS组织中PGRN、COX-2的mRNA表达水平与炎性因子mRNA表达水平的相关性

HS是烧伤伤口愈合最常见的后遗症,研究表明,在烧伤伤口愈合1年内31%~90%的患者会出现HS[7]。尽管药物疗法和手术切除能够治疗HS,但复发率仍较高[8]。深入了解HS潜在的形成机制,有助于发现预防和治疗HS的新靶点。

研究表明,慢性炎症反应与瘢痕形成有关[9]。PGRN是一种多功能生长因子,能够调节机体自身免疫和炎性反应,参与多种生物过程。Jing等[10]发现,系统性红斑狼疮患者血清PGRN水平升高,体外研究表明PGRN缺乏会导致炎性细胞因子减少,PGRN在系统性红斑狼疮的发展中发挥促炎作用。还有研究表明,PGRN mRNA在正常皮肤组织中几乎不表达,但在皮肤创伤后迅速呈现高表达水平,可促进炎症细胞浸润,延缓创伤愈合的过程[3]。PGRN可以直接作用于真皮成纤维细胞,在伤口愈合过程中可以促进成纤维细胞的增殖和迁移,而越来越多的学者认为真皮成纤维细胞的过度增殖与HS的形成密切相关[11-12]。本研究结果显示,HS组织的PGRN蛋白阳性表达率及mRNA表达水平均高于正常皮肤组织(均P<0.05),这表明PGRN在HS的形成中发挥重要作用。COX-2是诱导型炎性因子,与多种炎症反应相关。有学者发现,在HS组织和瘢痕疙瘩组织中均能检测到COX-2的阳性表达,并且认为局部应用COX-2阻滞剂抑制炎症反应,可阻断前列腺素E2的产生,减少瘢痕形成[5]。本研究结果显示,HS组织的COX-2蛋白阳性表达率及mRNA表达水平均高于正常皮肤组织(均P<0.05),说明COX-2表达水平升高与HS的形成相关。另外,本研究进一步分析发现,HS组织中PGRN mRNA表达水平与COX-2 mRNA表达水平呈正相关(P<0.05)。因此我们推测,PGRN、COX-2可能共同在HS的形成机制中发挥作用,但具体作用机制仍需进一步研究。

IL-1β、IL-6和TNF-α是常见的促炎细胞因子,IL-10是一种重要的抗炎因子。研究表明,IL-1β、IL-6和TNF-α在HS组织中呈高表达水平,IL-10在HS组织中呈低表达[13-14]。本研究结果显示,HS组织中的IL-6、IL-1β、TNF-α的mRNA表达水平均高于正常皮肤组织,IL-10的mRNA表达水平低于正常皮肤组织(均P<0.05),与上述研究结果一致。这表明这些炎症细胞因子可能是HS形成过程中的重要调节因子。本研究进一步分析发现,HS组织中的PGRN mRNA、COX-2 mRNA表达水平与IL-1β mRNA、IL-6 mRNA、TNF-α mRNA表达水平均呈正相关,与IL-10 mRNA表达水平均呈负相关(均P<0.05),这提示PGRN、COX-2可能通过调控这些炎性因子的产生,参与HS的形成。

综上所述,与正常皮肤组织相比,HS组织中PGRN、COX-2呈高表达,两者可能通过调节IL-1β、IL-6、TNF-α等炎性因子的产生,促进炎症反应,参与烧伤后HS的形成。

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